De acuerdo a las categorias suministradas anteriormente valore cada uno de los items :
4. EXCELENTE
3. SOBRESALIENTE
2. ACEPTABLE
1. POR MEJORAR
domingo, 24 de febrero de 2008
sábado, 23 de febrero de 2008
Conclusión
4. La conclusión incluye los descubrimientos que apoyan la hipótesis, posibles fuentes de error y lo que se aprendió del experimento.
3. La conclusión incluye los descubrimientos que apoyan la hipótesis y lo que se aprendió del experimento.
2. La conclusión incluye lo que fue aprendido del experimento.
1. No hay conclusión incluida en el informe.
3. La conclusión incluye los descubrimientos que apoyan la hipótesis y lo que se aprendió del experimento.
2. La conclusión incluye lo que fue aprendido del experimento.
1. No hay conclusión incluida en el informe.
Componentes del Reporte
4. Todos los elementos requeridos están presentes y elementos adicionales que añaden al reporte (por ejemplo, comentarios atentos y gráficas) han sido incluidos.
3. Todos los elementos requeridos están presentes.
2. Un elemento requerido está omitido, pero elementos adicionales que añaden al reporte (por ejemplo, comentarios atentos, gráficas) han sido incluidos.
1. Varios elementos requeridos han sido omitidos.
3. Todos los elementos requeridos están presentes.
2. Un elemento requerido está omitido, pero elementos adicionales que añaden al reporte (por ejemplo, comentarios atentos, gráficas) han sido incluidos.
1. Varios elementos requeridos han sido omitidos.
Apariencia y Organización
4. El reporte de laboratorio está mecanografiado y usa títulos y subtítulos para organizar visualmente el material.
3. El reporte de laboratorio está escrito a mano con esmero y usa títulos para organizar visualmente el material.
2. El reporte de laboratorio está escrito o mecanografiado con esmero, pero el formato no ayuda a organizar visualmente el material.
1. El reporte de laboratorio está escrito a mano y se ve descuidado y con tachones, múltiples borrones y/o desgarres y pliegues.
3. El reporte de laboratorio está escrito a mano con esmero y usa títulos para organizar visualmente el material.
2. El reporte de laboratorio está escrito o mecanografiado con esmero, pero el formato no ayuda a organizar visualmente el material.
1. El reporte de laboratorio está escrito a mano y se ve descuidado y con tachones, múltiples borrones y/o desgarres y pliegues.
Datos
4. Una representación profesional y precisa de los datos en tablas y/o gráficas. Las gráficas y las tablas están etiquetadas y tituladas.
3. Una representación precisa de los datos en tablas y/o gráficas. Las gráficas y tablas están etiquetadas y tituladas.
2. Una representación precisa de los datos en forma escrita.
1. Los datos no son demostrados o no son precisos.
3. Una representación precisa de los datos en tablas y/o gráficas. Las gráficas y tablas están etiquetadas y tituladas.
2. Una representación precisa de los datos en forma escrita.
1. Los datos no son demostrados o no son precisos.
Reproducción
4. Los procedimientos parecen ser reproducibles. Los pasos estn delineados en orden y están adecuadamente detallados.
3. Los procedimientos parecen ser reproducibles. Los pasos están delineados y adecuadamente detallados.
2. Todos los pasos están delineados, pero no hay suficientes detalles para reproducir los procedimientos.
1. Varios pasos no están delineados y no hay suficientes detalles para reproducir los procedimientos.
3. Los procedimientos parecen ser reproducibles. Los pasos están delineados y adecuadamente detallados.
2. Todos los pasos están delineados, pero no hay suficientes detalles para reproducir los procedimientos.
1. Varios pasos no están delineados y no hay suficientes detalles para reproducir los procedimientos.
Análisis
4. La relación entre las variables es discutida y las tendencias/patrones analizados lógicamente. Las predicciones son hechas sobre lo que podrÃa pasar si parte del laboratorio fuese cambiado o cómo podrÃa ser cambiado el diseño experimental.
3. La relación entre las variables es discutida y las tendencias/patrones analizados lgicamente.
2. La relación entre las variables es discutida, pero ni los patrones, tendencias o pedicciones son hechos basados en los datos.
1. La relación entre las variables no es discutida.
3. La relación entre las variables es discutida y las tendencias/patrones analizados lgicamente.
2. La relación entre las variables es discutida, pero ni los patrones, tendencias o pedicciones son hechos basados en los datos.
1. La relación entre las variables no es discutida.
Cálculos
4. Se muestra todos los cálculos y los resultados son correctos y están etiquetados apropiadamente.
3. Se muestra algunos cálculos y los resultados son correctos y están etiquetados apropiadamente.
2. Se muestra algunos cálculos y los resultados están etiquetados apropiadamente.
1. No se muestra ningún cálculo.
3. Se muestra algunos cálculos y los resultados son correctos y están etiquetados apropiadamente.
2. Se muestra algunos cálculos y los resultados están etiquetados apropiadamente.
1. No se muestra ningún cálculo.
Procedimientos
4. Los procedimientos están enlistados con pasos claros. Cada paso está enumerado y es una oración completa.
3. Los procedimientos están enlistados en un orden lógico, pero los pasos no están enumerados y/o no son oraciones completas.
2. Los procedimientos están enlistados, pero no están en un orden lógico o son difíciles de seguir.
1. Los procedimientos no enlistan en forma precisa todos los pasos del experimento.
3. Los procedimientos están enlistados en un orden lógico, pero los pasos no están enumerados y/o no son oraciones completas.
2. Los procedimientos están enlistados, pero no están en un orden lógico o son difíciles de seguir.
1. Los procedimientos no enlistan en forma precisa todos los pasos del experimento.
Materiales
4. Todos los materiales usados en el experimento son descritos clara y precisamente. Los bosquejos de los aparatos y la preparación son ordenados, fáciles de leer y están completamente etiquetados.
3. Casi todos los materiales usados en el experimento son descritos clara y precisamente. Un bosquejo etiquetado de un parato está incluido.
2. La mayoría de los materiales usados en el experimento están descritos con precisión. La preparación del aparato están descrita con precisión.
1. Muchos materiales están descritos sin precisión o no están del todo descritos.
3. Casi todos los materiales usados en el experimento son descritos clara y precisamente. Un bosquejo etiquetado de un parato está incluido.
2. La mayoría de los materiales usados en el experimento están descritos con precisión. La preparación del aparato están descrita con precisión.
1. Muchos materiales están descritos sin precisión o no están del todo descritos.
Conceptos Científicos
4. El reporte representa un preciso y minucioso entendimiento de los conceptos cientÃficos esenciales en el laboratorio.
3. El reporte representa un preciso entendimiento de la mayoría de los conceptos científicos esenciales en el laboratorio.
2. El reporte ilustra un entendimiento limitado de los conceptos científicos esenciales en el laboratorio.
1. El reporte representa un entendimiento incorrecto de los conceptos cientÃficos esenciales en el laboratorio.
3. El reporte representa un preciso entendimiento de la mayoría de los conceptos científicos esenciales en el laboratorio.
2. El reporte ilustra un entendimiento limitado de los conceptos científicos esenciales en el laboratorio.
1. El reporte representa un entendimiento incorrecto de los conceptos cientÃficos esenciales en el laboratorio.
RECUENTO DE PLAQUETAS
DIRECCION DE BACTERIOLOGIA Y LABORATORIO CLINICO
CURSO DE HEMOSTASIA Y BANCO DE SANGRE
LABORATORIO 2
RECUENTO DE PLAQUETAS
OBJETIVO
· Realizar el conteo de plaquetas existentes en un milímetro cúbico de sangre total
· Identificar morfológicamente las plaquetas coloreadas con Wright en extendidos de sangre periférica y apreciar su número por campo.
· Correlacionar la práctica con la teoría expuesta en clase.
MARCO TEORICO
Las plaquetas o trombocitos constituyen el elemento forme más pequeño de la sangre; su evaluación en el hemograma manual usualmente sólo se realiza en los extendidos coloreados. En el electrónico, su estudio aporta, además del valor numérico, otros parámetros de importancia diagnóstica, tales como promedio del volumen plaquetario e histograma plaquetario. A esta valoración la llamamos plaquetograma.
Existen dos métodos para el conteo de plaquetas: manual y electrónico.
PROCEDIMIENTO
El conteo de plaquetas se realiza en sangre anticuagulada con EDTA y diluida con oxalato de amonio al 1% mediante el uso de la pipeta para dilución de hematíes y el hemocitómetro.
RECURSOS
· Sangre anticuagulada con EDTA
· Solución de oxalato de amonio al 1% y/ o Rees Ecker
· Pipeta para dilución de hematíes
· Cámara de de recuento de Neubauer
· Laminilla de cuarzo
· Caja de Petri con papel de filtro humedecido
· Agitador de pipetas
· Microscopio
· Material bibliografico
· Presentación en Power point
METODO
· Mezcle cuidadosamente, por inversión por lo menos 10 veces, la sangre anticuagulada con el fin de obtener una muestra homogénea
· Llene la pipeta con la muestra de sangre hasta la marca 1.0 exactamente
· Elimine el exceso de sangre de las paredes externas de la pipeta para no contaminar la solución diluente
· Aspire el líquido diluente hasta la marca 101 exactamente
· Sujeta la pipeta entre los dedos índice y pulgar, desprenda la boquilla y deje en reposo durante 3 minutos
· Agite durante 10 minutos
· Descarte hasta la mitad del bulbo con el fin de eliminar el líquido del capilar e inmediatamente llene la cámara
· Llene la cámara de Neubauer en ambos lados y coloque en ambiente húmedo por 10 minutos. El ambiente húmedo se logra cubriendo la cámara con una Caja de Petri que llevará adherido un disco de papel de filtro humedecido
· Coloque la cámara en el microscopio. Enfoque con objetivo de 40X y observe el llenado de la cámara. No debe haber agregados plaquetarios. Cuidadosamente enfoque el cuadrado central
· Disminuya la intensidad de la luz. Así le será más fácil distinguir y contar las plaquetas
· Las plaquetas se reconocen como estructuras pequeñas, opacas, redondas o alargadas, medianamente refráctiles, y a veces con prolongaciones
· El número está determinado por el conteo de los 25 cuadrados en que se subdivide el cuadrado central, descartando las plaquetas que tocan las líneas derecha e inferior.
Cálculo
El número de plaquetas por mm se calcula de acuerdo con:
1. Volumen del área contada: 0.1 mm (1x1x0.1)
2. Dilución utilizada : 1:100
3. Número de células contandas
Plaquetas /mm Número de células contadas X 1 X dilución
Volumen de área contada
Plaquetas/mm = B X 10 X 100
Plaquetas /mm = B X 1000
Valores de Referencia
El rango normal para el recuento de plaquetas es de 150.000 a 400.000xmm
OBSERVACIONES
Las plaquetas se cuentan más fácilmente utilizando microscopio de contraste de fase, pero si el microscopio de luz se adecúa correctamente y el conteo se hace con un estricto control de calidad el resultado será igualmente confiable. Especial atención debe tenerse con las soluciones diluentes.
Estas no deben estar contaminadas, pues tanto las partículas como las bacterias pueden similar plaquetas. Los líquidos diluentes se deben mantener refrigerados y filtrar antes de su uso. La limpieza de la cámara de Neubauer y de las pipetas es importante en este procedimiento,
Si se observan agregados en el recuento, el procedimiento debe repetirse. El uso de EDTA como anticoagulante ayuda a disminuir la agregación plaquetaria. El rango de error para el recuento de plaquetas en el microscopio de luz es de 16 – 25%. No se debe informar el recuento de plaquetas sin confrontarlo con el extendido de sangre periférica, coloreado con Wright.
IDENTIFICACIÓN DE LAS PLAQUETAS COLOREADAS CON WRIGHT
Los extendido hechos directamente con sangre sin anticoagulante se colorean Wright para observar su apariencia tintorial, su morfología y su número.
RECURSOS
· Sangre sin anticoagulante
· Portaobjetos o cubreobjetos
· Colorante de Wright
· Microscopio
· Aceite de inmersión
· Material bibliográfico
· Presentación en Power point
METODO
· Realice por lo menos cuatro extendidos en cubreobjetos o en portaobjetos, según lo prefiera. Coloree con Wright
· Coloque al microscopio y observe en 10X para calificar la calidad de la muestra en cuanto a coloración y extensión. Si el extendido está técnicamente perfecto coloque el objetivo de 100X e identifique las plaquetas. Estas presentan una tonalidad levemente basófila, lo cual permite detallar una zona central granular llamada cromómero y una zona periférica más clara denominada hilómero. Observe el tamaño de la plaqueta circulante. Normalmente está entre 2 y 4
· Correlacione el número de plaquetas observadas con el recuento obtenido en cámara. Usualmente se observan de 8 a 20 plaquetas individuales por campo con objetivo de 100X
· Informe la presencia de agregados planetarios como un hallazgo normal. Su ausencia puede estar asociada con ingestión de medicamentos que inhiben el proceso de agregación.
· Anormalidades de tamaño o granularidad se deben observar e informar
TAREA
Elabore y entregue el informe de la Práctica
Elabore un mapa mental de la función de las plaquetas
Busque tres casos clínicos que correlacione la práctica con la teoría y realice el análisis y la discución.
EVALUACION:
50% Trabajos entregados
20% Evaluación escrita
30% Sustentación de los casos clínicos.
BIBLIOGRAFIA
BERRIO Margarita, CORREA María Cecilia, JIMENEZ Marta Elena. El hemograma. Editorial Universidad de Antioquia. 2003.
CURSO DE HEMOSTASIA Y BANCO DE SANGRE
LABORATORIO 2
RECUENTO DE PLAQUETAS
OBJETIVO
· Realizar el conteo de plaquetas existentes en un milímetro cúbico de sangre total
· Identificar morfológicamente las plaquetas coloreadas con Wright en extendidos de sangre periférica y apreciar su número por campo.
· Correlacionar la práctica con la teoría expuesta en clase.
MARCO TEORICO
Las plaquetas o trombocitos constituyen el elemento forme más pequeño de la sangre; su evaluación en el hemograma manual usualmente sólo se realiza en los extendidos coloreados. En el electrónico, su estudio aporta, además del valor numérico, otros parámetros de importancia diagnóstica, tales como promedio del volumen plaquetario e histograma plaquetario. A esta valoración la llamamos plaquetograma.
Existen dos métodos para el conteo de plaquetas: manual y electrónico.
PROCEDIMIENTO
El conteo de plaquetas se realiza en sangre anticuagulada con EDTA y diluida con oxalato de amonio al 1% mediante el uso de la pipeta para dilución de hematíes y el hemocitómetro.
RECURSOS
· Sangre anticuagulada con EDTA
· Solución de oxalato de amonio al 1% y/ o Rees Ecker
· Pipeta para dilución de hematíes
· Cámara de de recuento de Neubauer
· Laminilla de cuarzo
· Caja de Petri con papel de filtro humedecido
· Agitador de pipetas
· Microscopio
· Material bibliografico
· Presentación en Power point
METODO
· Mezcle cuidadosamente, por inversión por lo menos 10 veces, la sangre anticuagulada con el fin de obtener una muestra homogénea
· Llene la pipeta con la muestra de sangre hasta la marca 1.0 exactamente
· Elimine el exceso de sangre de las paredes externas de la pipeta para no contaminar la solución diluente
· Aspire el líquido diluente hasta la marca 101 exactamente
· Sujeta la pipeta entre los dedos índice y pulgar, desprenda la boquilla y deje en reposo durante 3 minutos
· Agite durante 10 minutos
· Descarte hasta la mitad del bulbo con el fin de eliminar el líquido del capilar e inmediatamente llene la cámara
· Llene la cámara de Neubauer en ambos lados y coloque en ambiente húmedo por 10 minutos. El ambiente húmedo se logra cubriendo la cámara con una Caja de Petri que llevará adherido un disco de papel de filtro humedecido
· Coloque la cámara en el microscopio. Enfoque con objetivo de 40X y observe el llenado de la cámara. No debe haber agregados plaquetarios. Cuidadosamente enfoque el cuadrado central
· Disminuya la intensidad de la luz. Así le será más fácil distinguir y contar las plaquetas
· Las plaquetas se reconocen como estructuras pequeñas, opacas, redondas o alargadas, medianamente refráctiles, y a veces con prolongaciones
· El número está determinado por el conteo de los 25 cuadrados en que se subdivide el cuadrado central, descartando las plaquetas que tocan las líneas derecha e inferior.
Cálculo
El número de plaquetas por mm se calcula de acuerdo con:
1. Volumen del área contada: 0.1 mm (1x1x0.1)
2. Dilución utilizada : 1:100
3. Número de células contandas
Plaquetas /mm Número de células contadas X 1 X dilución
Volumen de área contada
Plaquetas/mm = B X 10 X 100
Plaquetas /mm = B X 1000
Valores de Referencia
El rango normal para el recuento de plaquetas es de 150.000 a 400.000xmm
OBSERVACIONES
Las plaquetas se cuentan más fácilmente utilizando microscopio de contraste de fase, pero si el microscopio de luz se adecúa correctamente y el conteo se hace con un estricto control de calidad el resultado será igualmente confiable. Especial atención debe tenerse con las soluciones diluentes.
Estas no deben estar contaminadas, pues tanto las partículas como las bacterias pueden similar plaquetas. Los líquidos diluentes se deben mantener refrigerados y filtrar antes de su uso. La limpieza de la cámara de Neubauer y de las pipetas es importante en este procedimiento,
Si se observan agregados en el recuento, el procedimiento debe repetirse. El uso de EDTA como anticoagulante ayuda a disminuir la agregación plaquetaria. El rango de error para el recuento de plaquetas en el microscopio de luz es de 16 – 25%. No se debe informar el recuento de plaquetas sin confrontarlo con el extendido de sangre periférica, coloreado con Wright.
IDENTIFICACIÓN DE LAS PLAQUETAS COLOREADAS CON WRIGHT
Los extendido hechos directamente con sangre sin anticoagulante se colorean Wright para observar su apariencia tintorial, su morfología y su número.
RECURSOS
· Sangre sin anticoagulante
· Portaobjetos o cubreobjetos
· Colorante de Wright
· Microscopio
· Aceite de inmersión
· Material bibliográfico
· Presentación en Power point
METODO
· Realice por lo menos cuatro extendidos en cubreobjetos o en portaobjetos, según lo prefiera. Coloree con Wright
· Coloque al microscopio y observe en 10X para calificar la calidad de la muestra en cuanto a coloración y extensión. Si el extendido está técnicamente perfecto coloque el objetivo de 100X e identifique las plaquetas. Estas presentan una tonalidad levemente basófila, lo cual permite detallar una zona central granular llamada cromómero y una zona periférica más clara denominada hilómero. Observe el tamaño de la plaqueta circulante. Normalmente está entre 2 y 4
· Correlacione el número de plaquetas observadas con el recuento obtenido en cámara. Usualmente se observan de 8 a 20 plaquetas individuales por campo con objetivo de 100X
· Informe la presencia de agregados planetarios como un hallazgo normal. Su ausencia puede estar asociada con ingestión de medicamentos que inhiben el proceso de agregación.
· Anormalidades de tamaño o granularidad se deben observar e informar
TAREA
Elabore y entregue el informe de la Práctica
Elabore un mapa mental de la función de las plaquetas
Busque tres casos clínicos que correlacione la práctica con la teoría y realice el análisis y la discución.
EVALUACION:
50% Trabajos entregados
20% Evaluación escrita
30% Sustentación de los casos clínicos.
BIBLIOGRAFIA
BERRIO Margarita, CORREA María Cecilia, JIMENEZ Marta Elena. El hemograma. Editorial Universidad de Antioquia. 2003.
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